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腦黏體蟲

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腦黏體蟲
三角孢子蟲期的腦黏體蟲Myxobolus cerebralis。注意有三個「尾巴」。
科學分類 編輯
界: 動物界 Animalia
門: 刺胞動物門 Cnidaria
綱: 黏孢子蟲綱 Myxosporea
目: 雙殼目 Bivalvulida
科: 碘泡蟲科 Myxobolidae
屬: 碘泡蟲屬 Myxobolus
種:
腦黏體蟲 M. cerebralis
二名法
Myxobolus cerebralis
Hofer, 1903
異名
  • Myxosoma cerebralis
  • Triactinomyxon dubium
  • Triactinomyxon gyrosalmo

腦黏體蟲學名Myxobolus cerebralis)是一種寄生於鮭科(包括鮭魚鱒魚及其同類)的黏孢子蟲,可以導致養殖及野生的鮭魚和鱒魚發生旋轉病。大約一個世紀前,在德國虹鱒上首次發現了腦黏體蟲,但範圍很快就擴大了並出現在歐洲的大多數國家(包括俄羅斯)、美國南非[1]及其它國家。1980年代,研究發現腦黏體蟲需要感染一種顫蚓科環節動物來完成其生命周期[2]。這一寄生蟲利用刺絲囊胞極絲刺入宿主細胞進行感染。

旋轉病主要在幼魚發病,並導致骨骼變形及損傷神經。發病的魚以彆扭的螺旋狀向前「旋轉」而不是正常地游動,同時也不容易找到飼料並容易被捕食。此病在幼魚發病的致死率很高,感染的群體死亡率可高達90%,而存活的魚也會因為殘留在軟骨及骨骼里的寄生蟲而發生變形。這些魚形同寄生蟲的儲藏室,並不斷向水中釋放寄生蟲而導致其它魚死亡。腦黏體蟲是致病性最高、對魚類養殖業最有害的黏體動物之一。它是首個致病機理症狀都得到科學描述的黏孢子蟲。[3]這一寄生蟲不會傳播給人。

分類學

腦黏體蟲的分類學和命名及歸類到黏體動物亞門有著複雜的歷史。最初認為這種寄生蟲會感染魚(因此使用了種名「腦」cerebralis),但是很快就在魚的神經系統發現了這一寄生蟲並發現其主要感染軟骨及骨骼。曾有人試圖將名稱改為能更準確描述這一生物的「軟骨黏體蟲Myxobolus chondrophagus」,但由於命名法的規則而無法更名。[1]後來發現,先前稱為Triactinomyxon dubiumT. gyrosalmo (放射孢子綱Class Actinosporea)的生物事實上是腦黏體蟲的三角孢子蟲期,同時也將腦黏體蟲的生命周期擴展到三角孢子蟲期。[4]同樣,其它放射孢子綱也被列入各種不同黏孢子蟲綱的生命周期。

今天,以前被認為是多細胞原生動物黏體動物亞門也被許多科學家認為是動物,雖然它們的正式狀態並沒有改變。最近對分子領域的研究表明,這一類動物可能與兩側對稱動物刺胞動物門有關。刺胞動物門可能在形態學上更接近,因為這兩類動物都有突出的極絲[5],但兩側對稱動物在一些遺傳學研究上可能更接近[6]

形態學

腦黏體蟲在三角孢子蟲期的結構示意圖

腦黏體蟲M. cerebralis有著許多不同分期,從單細胞到相對大的孢子,但並不是全部都得到詳細的研究。

三角孢子蟲期(Triactinomyxon stage)

這一階段稱為三角孢子蟲triactinomyxon spores,可以感染魚類,是一個約150微米(μm)長的單一類型。這一類型有三個突出或「尾巴」,每根「尾巴」的長度可達200微米。同時,這一類型的尾部有一個孢子原生質,孢子原生質含有64個生殖細胞並由細胞膜環繞[5]。另外還有三個極囊,每個極囊都包含一個170~180 μm長的盤繞的極絲[2]。這一階段和黏孢子蟲期的極絲(見上圖)快速射入宿主的體內,並創造一個供孢子原生質進入的通道。

孢子原生質期(Sporoplasm stage)

在接觸魚宿主並從極囊中發射出來後,孢子原生質被容納在三角孢子蟲進入上皮或腸道的中間「柱」。首先,孢子原生質經歷了有絲分裂來生成更多的變形蟲細胞。這些變形蟲細胞可以進入更深的組織層,以便能到達腦軟骨。[2]

黏孢子蟲期(Myxosporean stage)

通過魚體內的孢子增殖期演化而來的黏孢子蟲為晶體狀。這些黏孢子蟲的直徑約為10微米並由六個細胞組成。其中的兩個細胞形成極囊,兩個合併形成雙核的孢子原生質,另外兩個形成保護瓣[5]。黏孢子蟲可以感染寡毛綱動物,並可在消化的魚軟骨殘餘中找到。由於不同屬之間形態學十分相似,一般很難將其與相關的品種區別開來。雖然腦黏體蟲是唯一可以在鮭亞目軟骨發現的黏孢子蟲,其它外觀相似的品種也可能在皮膚、神經系統和肌肉中存在。[2]

生命周期

腦黏體蟲有一個雙宿主的生命周期,包括鮭魚和顫蚓科環節動物。到目前為止,唯一已知會感染腦黏體蟲的蠕蟲是正顫蚓英語Tubifex tubifexTubifex tubifex[2],雖然目前科學家表明T. tubifex可能會指幾個不同的品種[3]。首先,黏孢子蟲被顫蚓科環節動物所消化。在蠕蟲的腸道內腔,孢子會排出極囊並用極絲附在腸道上皮。殼瓣沿縫脊打開,雙核生殖細胞則通過蠕蟲腸道上皮細胞之間滲透進入。細胞進行繁殖,並通過無性細胞二分裂的無卵核受精過程產生出很多變形蟲。在繁殖過程完成後,上皮細胞的胞間空隙超過了10個並排的蠕蟲並可能被感染。[7]

感染後約60~90天,寄生蟲經歷了有性細胞階段的孢子形成,並發展為泛孢子囊,其中每個都包含8個三角孢子蟲期的孢子。這些孢子由寡毛綱動物的肛門排放入水中。[5]另外,魚類也可能因為吃到感染的寡毛綱動物而感染。[5]已經感染的顫蚓會釋放三角孢子蟲至少1年。[7]三角孢子蟲的孢子可以游在水中並通過皮膚感染鮭亞目動物。這些孢子進入魚體內只需要幾秒就已經足夠。只要五分鐘,生殖細胞稱為孢子原生質的液囊就可以進行魚的上皮細胞。而在一小時以內,孢子原生質就可以分裂成許多細胞在魚體內傳播。[5]

在魚的體內,這種繁殖包括細胞內和細胞外的軟骨內無性內生過程,也就是說新的細胞都從老細胞內生長而來。魚體內的最後階段是黏孢子蟲,黏孢子蟲是由孢子生殖形成。當魚體腐爛或被吃掉後,它們就進入環境中。[5]最近的一些研究表明,一些魚在存活時會排出仍存活的黏孢子蟲。[8]

對於蠕蟲而言,黏孢子蟲是非常堅韌的:「腦黏體蟲的胞子可以在零下20°C存活至少3個月,13°C的土壤中存活5個月,並可以通過白斑狗魚Esox lucius綠頭鴨Anas platyrhynchos的腸道而不失感染性」[9]。三角孢子蟲存活時間更短,根據溫度的不同只能存活34天或更短時間[10]

病理學

一頭成年溪紅點鮭在感染腦黏體蟲後骨骼變形。Thomas L. Wellborn, Jr.博士拍照

腦黏體蟲對多種鮭亞目魚類的感染均有報道:其中有8種「大西洋」鮭亞目,斑鱒屬;4種「太平洋」鮭亞目,太平洋鮭屬;4種嘉魚,紅點鮭屬;茴魚,茴魚屬以及哲羅魚,哲羅鮭屬[11]。腦黏體蟲會通過三角孢子蟲的附著和不同階段在組織、神經以及消化軟骨內的遷移對其魚宿主造成傷害。[5]魚的尾巴會變黑,但除了軟骨的病變外,通常內臟器官看起來都較健康。[2]其它症狀包括幼魚的骨骼變形及「旋轉病」行為(追尾)。通常認為這些症狀是由於推動平衡導致,實際是由於脊髓和低位腦幹受損導致[3]。試驗表明,魚可以在皮膚上就殺死黏體蟲(可能是抗生素的作用)。但是當它們進入中樞神經後,魚就無法再對其進行攻擊。不同品種之間的反應也並不相同[3]

在正顫蚓T. tubifex,從消化壁釋放的三角孢子蟲會對蠕蟲的黏膜造成傷害。這種情況會在同一條蠕蟲上發生上千次,且一般認為這會影響營養吸收[5]。另外,被感染的蠕蟲體重會降低並退色[3]。孢子幾乎只在10°C~15°C體溫之間時從蠕蟲體內釋放,所以生活在水溫較高或較低環境中的魚都不大容易被感染且感染率也存在一定的季節性[3]

易感性

魚的大小、年齡、三角孢子蟲的密度及水溫都會影響魚的感染率,而魚品種的影響目前還不大確定[12]。由於5月齡以下的魚骨骼還未完全成骨,這一階段的魚受到該疾病的影響也最大。這會導致幼魚更可能感染並變形[13]並提供更多軟骨來飼餵腦黏體蟲。一個對7個品種不同品系的研究發現暴露兩個小時後,溪紅點鮭虹鱒(一個品系除外)比其它品種更容易感染腦黏體蟲,而公牛鱒大鱗大麻哈魚河鱒英語Salmo trutta北極茴魚則最不容易受到感染[12]。但河鱒可能會攜帶這種寄生蟲。它們並不會表現出任何症狀但卻可能是腦黏體蟲的原始宿主[14]。由於河鱒並不會表現出症狀,所以直到外來的虹鱒被引進到歐洲才發現了這一寄生蟲的存在[3]。不同鮭亞目的易感性都在鮭亞目對旋轉病的易感性英語Salmonid susceptibility to whirling disease中列出。

診斷

正常一致的鱒魚軟骨在腦黏體蟲感染後出現病變的疤痕,相鄰的組織變弱並變形。

魚類對於旋轉病中度或嚴重的臨床感染,可以根據初次感染35-80天後的行為及外觀變化進行推理診斷。由於受傷及日糧中缺乏色氨酸抗壞血酸也可以導致類似的情況,最終診斷應當以在魚軟骨內發現黏孢子蟲為準[2]。在嚴重感染的情況下,應當對軟骨進行顯微檢查並發現黏孢子蟲[2]。在輕微感染的情況下,更常見的檢測是在查找黏孢子蟲前調查頭軟骨中胃蛋白酶胰蛋白酶的消化情況(the pepsin-trypsin digest, PTD)。頭部和其它組織可以用組織病理學做進一步檢查並確認黏孢子蟲的位置和形態是否符合腦黏體蟲的特徵。組織部分的胞子血清學鑑定也可以使用抗孢子的抗生素。寄生蟲的鑑定可以用聚合酶鏈鎖反應(PCR)對腦黏體蟲415鹼基對上18S rRNA基因進行擴增並確認[15]。初篩用的魚應當處於最可能感染該寄生蟲的生命階段。已經暴發該寄生蟲的國家都會定期使用這些技術進行檢測,而一些國家(像澳大利亞加拿大)並沒有發生該寄生蟲但可能因進口而危險到本地魚群也會定期進行檢測。

影響

腦黏體蟲在德國(1893)、義大利(1954)、蘇聯(1955)、包括薩哈林島(1960)、美國(1958)、保加利亞(1960)、南斯拉夫(1960)、瑞典(1966)、南非(1966)、蘇格蘭(1968)、紐西蘭(1971)、厄瓜多(1971)、挪威(1971)、哥倫比亞(1972)、黎巴嫩(1973)、愛爾蘭(1974)、西班牙(1981)及英格蘭(1981)均有報道

雖然最初在中歐的河鱒英語Salmo truttaSalmo trutta)和東北亞的其它鮭魚上發現了野生病原,虹鱒Oncorhynchus mykiss)對病原的傳播卻大大增加了這種寄生蟲的影響。由於無法對腦黏體蟲產生自然免疫,虹鱒特別易感並可以傳播很多孢子給同地區的其它魚類甚至是抗病品種,如河鱒,並因此攜帶過多寄生蟲並導致大量死亡。在腦黏體蟲暴發的地區,可能導致魚群的大量減少甚至滅絕。[16][17]

在歐洲的影響

由於這一物種已經成為歐洲的地方流行病並使魚群得到免疫,腦黏體蟲對歐洲的影響在某種程度上得到減輕。作為最易感的物種,虹鱒並非歐洲的本土魚類。由於野生繁殖的魚群很少,也很少有足夠小的野生虹鱒會感染這種寄生蟲。另一方面,它們廣泛養殖於游釣水域及該寄生蟲影響最大的水產業。歐洲設計用於防止虹鱒魚苗受到感染的孵化及培育方法也被證明是成功的。這些技術包括在無孢子的水域進行孵化並在水箱或水道中培育魚苗到成骨期。這些方法特別關注水源質量,以避免在換水時引入孢子[18]。在骨骼成骨並被認為可在臨床上對此寄生蟲產生抵抗力後,魚苗才被移到地面池塘中。[13]

在紐西蘭的影響

紐西蘭在1971年首次發現腦黏體蟲。這種寄生蟲只在遠離多數水產養殖區的南島的河流發現。另外,紐西蘭對鮭亞目的商業化養殖也很少感染旋轉病,而且這種寄生蟲也並沒有感染這裡的本地鮭亞目品種[19]。這種寄生蟲存在的一個間接重要影響是對出口到澳大利亞鮭魚產品的嚴格檢疫。

在美國的影響

根據旋轉病行動,腦黏體蟲在美國將近24個州(以綠色標出)均得到過報道

1956年,賓夕法尼亞州由於從歐洲引進了已經感染的鱒魚而將腦黏體蟲引入,並傳播至南部和西部地區。這也是腦黏體蟲在北美首次得到報道[20]。直至1980年代,旋轉病仍被認為是在孵化池虹鱒的管理問題所造成。但是最近在落基山脈諸州(科羅拉多州懷俄明州猶他州蒙大納州愛達荷州新墨西哥州)的天然水域也存在了該寄生蟲,並在這裡的一些游釣河流造成了較高死亡率。美國西部的一些河流甚至損失了90%的鱒魚[21]。另外,旋轉病也影響了在旅遊業中相當重要的休閒遊釣,這一行業在美國西部一些州份的經濟中也占據了較大比重。例如,蒙大拿旋轉病特別小組(Whirling Disease Task Force)估計鮭魚相關休閒娛樂產業產生的消費僅在蒙大納州就有300,000,000美元。[3]。更糟的是,一些腦黏體蟲感染的魚類(公牛鱒山鱒硬頭鱒)已經受到威脅或瀕臨絕種[3]。科羅拉多州和蒙大納州受到影響最為嚴重,而加利福尼亞州密西根州紐約州受到的影響則最輕,具體的原因仍不清楚,但可能與環境條件有氣候條件有關[22]

防控措施

一些生物學家試圖在三角孢子蟲成熟前將其滅活。在實驗室里,目前只有強酸強鹼、中高濃度的鹽類或電可以提前讓極絲失活。而神經化學、刺細胞動物的化學致敏物質及鱒魚黏膜均無效[23],同時也會令魚受到麻醉或死亡[24]。如果孢子能得到滅活則無法感染魚,但仍不清楚是否實驗室的方法能否用於野生魚類。

一些魚的品系比其它魚更具抗病力,甚至是同一品種的[12]。使用抗病品系可能會幫助減少水產養殖中旋轉病的發病率及嚴重性。也有證明表明魚群可在一定時間後自行產生抗病力[25]。另外,水產業也可以通過不使用地面池塘養殖幼魚來避免感染腦黏體蟲。這可以使幼魚不會感染到顫蚓並更容易通過過濾、氯化及紫外消毒來消滅孢子和寡毛綱動物[2]。減少顫蚓群體的技術包括:定期對孵化池或養殖用池塘消毒,並在室內無病原的水中飼養小鱒魚。光滑表面的混凝土或保持清潔的塑料水道及無污染的水可以保持養殖環境免受疾病影響[2]

最後,一些藥物如呋喃唑酮(痢特靈)、苯菌靈煙麴黴素氯胍氯胺酮可以阻止孢子發育並減少感染率[2]。舉個例子,有個研究表明給虹鱒Oncorhynchus mykiss飼餵煙麴黴素可以將受到感染的魚總數從73%~100%減少至10%~20%[9]。不幸的是,這種治療方法並不適用於野生鱒魚[7],而且在美國食品藥品監督管理局(FDA)批准進行的研究中也沒有發現任何藥物能有效治療這一疾病[3]

游釣人員可以透過以下方法避免傳播這種寄生蟲。

  1. 在不同地方釣魚時應事先清潔釣具並不將魚從一個水域帶到另一水域,這樣也能避免不同水道間的交叉污染。
  2. 孢子可以隱藏在氈底的涉水鞋下,需要用10%氯漂白劑和水進行消毒至少15分鐘並徹底沖洗。
  3. 由於魚體中的孢子會釋放到水中,魚骨或內臟不能暴露在任何水體中。鮭魚和鱒魚不能用作誘餌。

參考文獻及注釋

  1. ^ 1.0 1.1 Bartholomew, J.L.; Reno, P.W. The history and dissemination of whirling disease. American Fisheries Society Symposium. 2002, 29: 3–24 (英語). 
  2. ^ 2.00 2.01 2.02 2.03 2.04 2.05 2.06 2.07 2.08 2.09 2.10 Markiw, M.E. Salmonid Whirling disease. Fish and Wildlife Leaflet. 1992, 17: 1–3 [2017-03-08]. (原始內容存檔於2011-05-27) (英語). 
  3. ^ 3.00 3.01 3.02 3.03 3.04 3.05 3.06 3.07 3.08 3.09 Gilbert, M. A. & Granath, W.O. Jr. (2003). Whirling disease and salmonid fish: life cycle, biology, and disease. Journal of Parasitology 89: 658–667.
  4. ^ Kent, M. L., Margolis, L. & Corliss, J.O. (1994). The demise of a class of protists: taxonomic and nomenclatural revisions proposed for the protist phylum Myxozoa Grasse, 1970. Canadian Journal of Zoology 508: 932–937.
  5. ^ 5.0 5.1 5.2 5.3 5.4 5.5 5.6 5.7 5.8 Hedrick, R. P. & El–Matbouli, M. (2002). Recent advances with taxonomy, life cycle, and development of Myxobolus cerebralis in the fish and oligochaete hosts. American Fisheries Society Symposium 29: 45–53.
  6. ^ Monteiro, A. S., Okamura, B., and P. W. H. Holland. (2002). Orphan worm finds a home: Buddenbrockia is a Myxozoan. Molecular Biology and Evolution 19: 968–971. 存档副本. [2005-05-09]. (原始內容存檔於2005-04-11). 
  7. ^ 7.0 7.1 7.2 El-Matbouli, M., and Hoffmann, R.W. (1998). Light and electron microscopic studies on the chronological development of Myxobolus cerebralis to the Actinosporean stage in Tubifex Tubifes. International Journal For Parasitology 28: 195–217.
  8. ^ Nehring, R. B. Thompson, K. G. Taurman, K. A. & Shuler, D.L. (2002). Laboratory studies indicating that living brown trout Salmo trutta expel viable Myxobolus cerebralis myxospores. American Fisheries Society Symposium 29: 125–134.
  9. ^ 9.0 9.1 El-Matbouli, M., and Hoffmann, R.W. (1991). Effects of freezing, aging, and passage through the alimentary canal of predatory animals on the viability of Myxobolus cerebralis spores. Journal of Aquatic Animal Health 3: 260–262.
  10. ^ Markiw, M.E. (1992). Experimentally induced whirling disease. II. Determination of longevity of the infective triactinomyxon stage of Myxobolus cerebralis by vital staining. Journal of Aquatic Animal Health 4 (1): 44–47.
  11. ^ Lom, J. & Dyková, I. (1992). Protozoan Parasites of Fishes, Elsevier, Amsterdam. ISBN 0-444-89434-9.
  12. ^ 12.0 12.1 12.2 Vincent, E. R. (2002). Relative susceptibility of various salmonids to whirling disease with emphasis on rainbow and cutthroat trout.. American Fisheries Society Symposium 29: 109–115.
  13. ^ 13.0 13.1 Halliday, M.M. (1976). The Biology Of Myxosoma cerebralis: The Causative Organism Of Whirling Disease Of Salmonids. Journal of Fish Biology 9: 339–357.
  14. ^ Hoffmann, G. (1962). Whirling Disease Of Trout. U.S. Department Of The Interior, Fishery Leaflet 508: 1–3.
  15. ^ Andree, K.B., MacConnell, E. and Hedrick, R.P. (1998). A nested polymerase chain reaction for the detection of genomic DNA of Myxobolus cerebralis in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Diseases of Aquatic Organisms 34: 145–54.
  16. ^ Nehring, R.B. (1996). Whirling Disease In Feral Trout Populations In Colorado. In E.P. Bergersen And B.A.Knoph (eds.), Proceedings: Whirling Disease Workshop––where Do We Go From Here? Colorado Cooperative Fish And Wildlife Research Unit, Fort Collins.: pp.159.
  17. ^ Vincent, E.R. (1996). Whirling Disease—the Montana Experience, Madison River.. In, E.P. Bergersen And B.A.Knoph (eds.), Proceedings: Whirling Disease Workshop—where Do We Go From Here? Colorado Cooperative Fish And Wildlife Research Unit, Fort Collins.: pp.159.
  18. ^ Ghittino, P. (1970). Present Status Of Whirling Disease In Italian Trout Farms. Riv. It. Piscic. Ittiopat 5: 89–92.
  19. ^ Stone M A B, MacDiarmid S C, Pharo H J. (1997). Import health risk analysis: salmonids for human consumption. Ministry of Agriculture Regulatory Authority, New Zealand.[1]頁面存檔備份,存於網際網路檔案館
  20. ^ Bergersen, E.P., and Anderson, D.E. (1997). The distribution and spread of Myxobolus cerebralis in the United States. Fisheries 22 (8): 6–7.
  21. ^ Tennyson, J. Anacker, T. & Higgins, S. (January 13, 1997). Scientific breakthrough helps combat trout disease. U.S. Fish and Wildlife Service Whirling Disease Foundation News Release.存档副本. [2006-01-03]. (原始內容存檔於2005-06-16). 
  22. ^ Wisconsin Department of Agriculture, Trade and Consumer Protection. Division of Animal Health. (October 2001). "Fish Health Advisory: Whirling Disease in Trout." 存档副本 (PDF). [2005-05-17]. (原始內容 (PDF)存檔於2004-06-26).  (.pdf).
  23. ^ Wagner, E. J. Cannon, Q. Smith, M. Hillyard, R. & Arndt, R. (2002). Extrusion of Polar Filaments of the Myxobolus cerebralis Triactinomyxon by salts, electricity, and other agents. American Fisheries Society Symposium 29: 61–76.
  24. ^ El-Matbouli, M., Hoffmann, R.W., Shoel, H., McDowell, T. S., & Hedrick, R.P. (1999). Whirling disease: host specificity and interaction between the actinosporean stage of Myxobolus cerebralis and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cartilage. Diseases of Aquatic Organisms 35: 1–12.
  25. ^ Whirling Disease Foundation News. July, 2003. Research on whirling disease resistant rainbow trout 網際網路檔案館存檔,存檔日期2007-07-31.

外部連結